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健康中国 · 使命担当

加快打造原始创新策源地,加快突破关键核心技术,努力抢占科技制高点,为把我国建设成为世界科技强国作出新的更大的贡献。

——习近平总书记在致中国科学院建院70周年贺信中作出的“两加快一努力”重要指示要求

面向世界科技前沿、面向经济主战场、面向国家重大需求、面向人民生命健康,率先实现科学技术跨越发展,率先建成国家创新人才高地,率先建成国家高水平科技智库,率先建设国际一流科研机构。

——中国科学院办院方针

健康中国 · 使命担当

加快打造原始创新策源地,加快突破关键核心技术,努力抢占科技制高点,为把我国建设成为世界科技强国作出新的更大的贡献。——习近平总书记在致中国科学院建院70周年贺信中作出的“两加快一努力”重要指示要求

面向世界科技前沿、面向经济主战场、面向国家重大需求、面向人民生命健康,率先实现科学技术跨越发展,率先建成国家创新人才高地,率先建成国家高水平科技智库,率先建设国际一流科研机构。——中国科学院办院方针

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      中国科学院广州生物医药与健康研究院(简称“广州健康院”)于2003年7月由中国科学院、广东省人民政府、广州市人民政府三方签约共建,于2006年3月获得中编办批复正式成立。 广州健康院的定位是:面向人民健康,聚焦生命健康领域前沿重大科学问题和重要疾病机理,以建成国际一流的生物医药与健康领域新型研发机构和创新人才培养高地为目标,提供保障人类健康和疾病防控的原创性基础理论、突破性前沿技术与系统性解决方案为使命,优化科技成果快速转化的机制与途径,满足国家战略需求和区域经济社会发展,促进生物医药产业发展,发挥国家战略科技力量的核心作用。
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      现任领导
      • 孙飞

        副院长(主持工作)

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        党委书记、副院长

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谱系设施
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  • 中国科学院广州生物医药与健康研究院在谱系细胞单克隆自动化获取整机技术研究中取得新进展

    发布时间:2024-04-17

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    尽管谱系节点细胞在再生医学中的应用前景广阔,但基于传统人为操作获取谱系细胞单克隆的方法需要消耗大量时间和劳动力,获取效率通常比较低,且无法以无标记、无酶活反应参与、非侵入式的方式获取谱系细胞单克隆。此外,利用微流控技术虽然可以提高谱系细胞收获效率,但这种方法无法获得基于谱系特异性的细胞单克隆。因此,发展能够高效富集谱系细胞单克隆的自动化整机技术显得尤为重要。由于细胞-细胞/细胞-基质之间的粘附力变化是谱系细胞命运变化中的一个关键环节,通过调节流体剪切力大小可以实现以无标记、无酶活反应参与、非侵入式的方式分离/选择具有不同粘附特性的谱系细胞单克隆,因此这种策略可以应用于基于细胞类型特异性的单克隆工程化获取。

    近日,中国科学院广州生物医药与健康研究院(广州健康院)张骁研究员团队提出一种基于结构微流体创新的谱系细胞单克隆自动化获取策略,以无标记、无酶活反应参与、非侵入式的方式,在体细胞重编程过程出现的复杂谱系中实现了对特定谱系的单克隆性细胞的自动化获取,并研发出基于结构微流体的细胞单克隆获取整机技术(图1)。该原创性策略被部署于广州健康院前期自主研发的自动化干细胞诱导培养装备,提高了人诱导多能干细胞(hiPSCs)单克隆的获取效率与纯度,提升了系统鲁棒性(robustness)及缩短了体细胞重编程后持续纯化hiPSCs(sub-cloning)的建系周期。相关研究成果以“Selecting Monoclonal Cell Lineages from Somatic Reprogramming Using Robotic-Based Spatial-Restricting Structured Flow”为题在国际权威学术期刊 Research 上在线发表。

    在研究中,研究人员通过分析不同体细胞重编程过程中细胞粘附分子的表达水平变化情况,发现细胞多能性基因的表达水平与Integrin家族基因的表达量呈负相关性,而与Cadherin家族基因的表达量呈正相关性。由于Integrins是细胞与细胞外基质(ECM)相互作用的关键粘附分子,而Cadherins是细胞与细胞之间相互连接的重要分子,这意味着体细胞重编程转变成多能干细胞这一谱系命运变化过程中,细胞与ECM的连接可能会减弱,而细胞与细胞之间的连接可能会增强。为了证明这个假设,作者提出进一步通过设计平行平板流动腔实验和免疫荧光实验来进行验证。实验结果与预期假设相一致,并且平行平板流动腔实验初步证明了流体剪切力有望成为分离/选择特定类型粘附细胞的好技术路径。

    随后,作者基于流体动力学原理设计了以可以产生局部结构微流体的细胞获取微型挑针结构(PTMS),机械团队克服了流场效果与多曲面加工实现的难题,反复校验加工结构,最终基于PTMS产生的结构微流体(PTMS-FLOW)实现了对基于空间限位谱系细胞的特异性挑取。此外,研究证明了PTMS-FLOW可根据流速变化在Z轴-h0的为常量的条件下,应对不同细胞类型的粘附力差异,实现以无标记、无酶活反应参与、非侵入式、和非接触的方式对不同谱系细胞进行特异性的选择。该研究证明了结构微流体是作为分离/选择特定谱系类型粘附细胞的可自动化的技术路径,为后续进一步研究谱系细胞单克隆的自动化获取提供了理论基础(图2)。

    为了将上述策略应用于对体细胞重编程过程中特定谱系的细胞的自动化获取,作者团队通过克服机械模块控制和精准调度的难题,结合细胞光学成像和自适应算法,实现精准操控微结构的功能底部与细胞单克隆之间的Z轴间距和水平位移,从而确保精准操控PTMS-FLOW作用于单克隆性的谱系细胞上,以此实现在体细胞重编程过程出现的复杂谱系中快速获取hiPSCs细胞单克隆的目标。

    此外,作者团队借助自动化整机技术的精确的流体操控能力,设计了一种双挑模式(Dual Run Selection),通过使用两次不同强度的剪切流体分别获取不同类型粘附特性的谱系细胞,实现了对特定空间位置的hiPSCs谱系细胞单克隆的特异性选择(图3),并能为下游hiPSCs实现特异性扩增提供纯化(sub-cloning)能力。

    该研究建立的整机技术通过大幅减少谱系细胞生成过程中的时间成本,以及人工操作量,使得谱系细胞获取和培养起来更简单。该研究为自动化生产特定谱系细胞用于临床干预提供了新的技术方案,并为再生医学基础研究提供更多自动化获取谱系细胞的工具,从而从技术手段和方法学方面促进再生医学领域的基础研究和应用落地。

    广州健康院陈学平博士、樊科高级工程师、卢俊高级工程师、张晟博士、董建华高级工程师及秦季生工程师为该论文的共同第一作者。广州健康院张骁研究员为该论文的唯一通讯作者。该研究得到了中国科学院、广东省科技计划、广州市科技计划等项目的支持。

    论文链接



    图1. 谱系细胞自动化获取策略整机技术概要



    图2. 基于空间定位的结构微流体研究不同谱系细胞的粘附分离作用



    图3 基于谱系细胞粘附力的差异,应用PTMS-FLOW实现了对重编程多能干细胞单克隆的选择


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